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研究综述:文献中的 CST® 抗 CAR 接头抗体

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随着用于治疗实体肿瘤、血液系统恶性肿瘤和自身免疫性疾病的嵌合抗原受体 (CAR) 细胞疗法不断发展,准确检测和监测 CAR 工程细胞对于实验验证至关重要。然而,开发和优化用于检测基于靶标抗原或抗独特型的单链可变片段 (scFv) CAR 表达的检测试剂可能非常耗时。此外,它们仅适用于检测针对特定表面抗原或特定 scFv 的 CAR。

CST 抗 CAR 接头重组单克隆抗体是一种强大的工具,可以识别和确认工程 CAR 的存在,且不依赖于其靶向抗原的特异性。由于大多数基于 scFv 的 CAR 含有重复的 G4S 或 Whitlow/218 接头序列,因此可以使用高度特异性的抗 G4S 和抗 Whitlow/218 抗体来监测几乎任何基于 scFv 的 CAR 的表面表达。抗 CAR 接头抗体图

抗 CAR 接头重组单克隆抗体与基于 scFv 的 CAR 的可变重链和可变轻链结构域之间的接头序列(G4S 或 Whitlow/218)结合。

科学家如何在研究中使用 CST 抗 CAR 接头抗体?在本次研究综述中,我们重点介绍了最近发表的利用 CST 抗 CAR 接头抗体在各种实验环境中检测、分析、定量和纯化 CAR 工程免疫细胞的论文。为了帮助您确定您感兴趣的研究,以下 CAR 表征工作流程框架用于描述研究作者如何利用 CST 抗 CAR 接头抗体:

 

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检测

快速轻松地评估评估 CAR 和靶标抗原表达

分析

探究免疫细胞的激活、增殖、活力和信号转导

定量

测量 CAR 转基因的转导效率

纯化

使用基于珠子或基于 FACS 的分选以高特异性富集 CAR+ 细胞

翻译

直接探究 CAR-T 细胞对 TME 的浸润

 

从用于监测 CAR 阳性细胞的筛选检测,到标记 CAR-T 细胞以进行纯化或激活,这些研究为基于接头抗体的检测方法及其应用提供了宝贵的见解。

探索 CST 的完整 CAR 工程细胞表征解决方案组合:

使用 CST CAR 接头抗体的同行评审出版物

以下是 CST CAR-Engineered Cell Characterization 解决方案在最近的同行评审论文中使用情况的摘要。请注意,该博客于 2025 年 3 月发布;抗 CAR 接头抗体问世还不到两年。 

 

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针对胶质瘤的 EphA3 CAR-T 细胞可产生治疗性记忆 T 细胞反应

Lertsumitkul 等人。(JITC 2024) | DOI: 10.1136/jitc-2024-009486

本研究描述了对针对 Ephrin A 型受体 3 (EphA3) 的第二代 CAR-T 细胞疗法的评估,作者在高级别​​胶质瘤(包括胶质母细胞瘤和弥漫性中线胶质瘤)中发现了该疗法。由于具有肿瘤特异性靶向性和穿透血脑屏障的能力,针对 EphA3 的 CAR-T 细胞疗法在体外和体内表现出强大的疗效,并在小鼠模型中实现了肿瘤清除。研究还发现,针对 EphA3 的 CAR-T 细胞可以产生长期免疫记忆,从而防止再次治疗时肿瘤复发。

用例:

定量:为了确定 T 细胞转导效率,采用 G4S Linker (E7O2V) Rabbit mAb 克隆来确认 EphA3 靶向 CAR-T 细胞的存在和扩增。


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接头特异性单克隆抗体为基于 scFv 的 CAR NK 细胞提供了一种简单可靠的检测方法

Schindler 等人(2024 年分子疗法) | DOI: 10.1016/j.omtm.2024.101328

CAR 自然杀伤 (NK) 细胞正在临床试验中进行研究,以了解其相对于 CAR-T 细胞疗法的潜在优势,包括将其用作同种异体细胞疗法。这项研究评估了抗 CAR 接头抗体作为通用且灵敏的 CAR-NK 细胞检测工具,并与其他常用方法进行了比较。研究表明,接头特异性 mAb 可以高特异性和灵敏度检测体外、全血中和患者来源的肿瘤球体中的不同 CAR NK 细胞,为基于 scFv 的 CAR 检测提供了一种有效且几乎通用的替代方案。此外,作者证明接头特异性抗体可用于 CAR NK 细胞的功能测试和富集。

用例: 

检测: 为了确认 CAR 表达,使用 Whitlow/218 linker (E3U7Q) Rabbit mAbG4S Linker (E7O2V) Rabbit mAb 克隆进行基于流式细胞术的各种 CAR 构建体检测。 

分析: Whitlow/218 linker (E3U7Q) Rabbit mAb 和 G4S Linker (E7O2V) Rabbit mAb 克隆用于激活检测,以确认其选择性激活 CAR NK 细胞的能力(探索 CST 的 T 细胞激活检测)。

纯化:使用 Whitlow/218 linker (E3U7Q) Rabbit mAb 和 G4S Linker (E7O2V) Rabbit mAb 克隆通过磁分离富集 CAR NK 细胞(探索 CST 的磁珠 CAR 富集检测)。作者证明,CAR NK 细胞在纯化后不会被激活,其活性也不会受到损害。


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使用抗 G4S Linker 抗体进行基于磁珠的 CAR T 细胞纯化

Harrer 等人(JIM 2024) | DOI: 10.1016/j.jim.2024.113667

本研究介绍了一种基于抗 G4S 接头抗体的磁分离 CAR-T 细胞纯化新方法。该方法可以将 CAR-T 细胞富集到高纯度水平,而不会影响其活性或功能。该方法在针对 CEA 和 Her2 的 CAR-T 细胞以及双特异性串联 CAR 上进行了测试。

用例:

纯化:使用 G4S Linker (E7O2V) Rabbit mAb 克隆在磁激活细胞分选 (MACS) 之前通过一步法实验步骤标记 CAR-T 细胞(探索 CST 的磁珠 CAR 富集检测),从而证明了高效纯化且不损害细胞活力。


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合成免疫检查点接合剂可保护 HLA 缺陷型 iPSC 及其衍生物免受先天免疫细胞毒性

Gravina 等人(Cell Press 2023)| DOI:10.1016/j.stem.2023.10.003

该研究的作者设计并测试了一类新型合成细胞表面分子(接合剂),可激活免疫细胞中的免疫检查点并抑制细胞毒性。具体来说,作者设计并测试了针对免疫检查点 SIRPa、TIM3 和 LILRB1 的接合剂,以防止来自 NK 细胞和巨噬细胞的细胞毒性免疫攻击。该方法旨在帮助保护同种异体免疫肿瘤学或再生细胞疗法免受排斥并提高其功效。

用例:

检测: G4S Linker (E7O2V) Rabbit mAb (Alexa Fluor® 647 Conjugate) #69782 用于在流式细胞术分析中检测和量化接合剂表面表达,该分析检查了工程接合剂与其靶标分子结合之前和之后的表达动态。 

检测: 流式细胞术测定中使用生物素化的抗 G4S 接头 F(ab’)2 片段来评估使用表达合成转基因 (SIRPa-E 和 CD64t) 的 B2M 敲除 iPSC 进行工程免疫逃避的可行性。


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评估抗 CAR 连接 mAb 在 BiTE/bsAbs 和 CAR T 细胞预处理后对 CAR T 进行监测的情况

Grahnert 等人(Biomedicines 2024)| DOI:10.3390/biomedicines12081641

本研究考察了使用抗 CAR 接头抗体监测接受双特异性抗体 (bsAb) 或双特异性 T 细胞接头 (BiTE) 治疗的患者的 CAR-T 细胞疗法的效果。当 CAR-T 细胞和 bsAbs/BiTE 都针对相同抗原时,传统的基于抗原的 CAR 检测方法会产生假阳性。研究人员分析了含有目前批准用于临床的所有 BCMA 和 CD19 靶向 CAR-T 细胞产品的样本,以证明抗 CAR 接头 mAb 提供了一种高度特异性的检测方法,且不受 BiTE 或 bsAb 治疗的影响。然而,不同临床可用的 CAR-T 细胞疗法的敏感性有所不同。

用例: 

检测: 发现 CST 抗 CAR 接头抗体对用 Idecel、Tisa-cel、Axi-cel、Brexu-cel 和 Liso-cel 处理的血液样本中的 CAR-T 细胞检测具有高度敏感性和特异性,从而提供了一种可靠的方法来区分 CAR-T 细胞染色与使用基于抗原的检测方法时同时检测免疫细胞接头引起的背景染色。然而,抗 CAR 接头 mAb 无法检测到 Cilta-cel(含有 G4S-CAR 接头)。

 


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CD8α结构域增强 GUCY2C CAR-T 细胞疗效

Baybutt 等人(2024 年癌症生物学与治疗) | DOI: 10.1080/15384047.2024.2398801

本研究检查了工程化 CAR 细胞的铰链和跨膜结构域,以确定不同的构建体如何影响 CAR 在实体肿瘤免疫疗法中的表现。具体来说,研究人员比较了针对结直肠癌的 GUCY2C 靶向 CAR 设计中来自 CD8ɑ 或 CD28 分子的铰链和跨膜结构域。研究人员发现,虽然结构域不会导致抗原独立的背景差异,例如 CAR 表达、分化和耗竭表型,但 CD8ɑ 结构域 CAR 对靶标表现出更大的亲和力。

用例:

检测:G4S Linker (E7O2V) Rabbit mAb (PE Con​​jugate) #38907 用于流式细胞术检测和定量 CAR 表面表达。还使用 Protein L 检测了表面表达,结果与使用接头抗体获得的结果相同。

检测:G4S Linker (E7O2V) Rabbit mAb (Alexa Fluor® 488 Conjugate) #50515 用于两个不同的流式细胞术实验,以标记和识别 CAR+ T 细胞:

  • 细胞内流式细胞术实验,其中细胞被通透以测量细胞因子的产生
  • 通过细胞表面标记物分析来确定 T 细胞表型,从而确定记忆状态并检测衰竭标记物

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Alexandra Foley
Alexandra Foley
Alexandra (Alex) Foley 是 CST 的一名科学作家,她热衷于将复杂的研究成果转化为生动易懂的故事,突出其在实际生活中的应用。Alex 在大学时学习了分子生物学和英语文学,之后她的写作生涯涉及了医疗保健和科学领域的多个学科。她喜欢探索各种话题,并通过讲故事的方式来启发和吸引读者。

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